Наиля Наримановна Мишина, Марина Александровна Ерохондина, Анастасия Владимировна Софронова, Элина Илгизовна Идрисова, Лилия Евгеньевна Матросова, Зухра Халимовна Сагдеева, Алмаз Рафаильевич Валиев

Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности

420075, г. Казань, Российская Федерация

куркумин, глюкан, микробиота, кишечник, микотоксины, белые крысы.

Исследования были проведены в условиях лаборатории микотоксинов отделения токсикологии ФГБНУ «ФЦТРБ-ВНИВИ». Опыты проводили на 56 белых крысах, которые были распределены на 7 групп. Первая группа служила биологическим контролем и получала полнорационный корм без микотоксинов. Во второй группе животные подвергались воздействию микотоксинов: Т-2 токсина, зеараленона, дезоксиниваленола, афлатоксина В1 и фумонизина В1. Третьей и четвертой группам скармливался корм, контаминированный микотоксинами, на фоне применения смеси хитин-глюканового комплекса (ХКГ) с куркумой в дозировках 0,05 % и 0,2 % от рациона. Пятая группа получала корм, содержащий смесь микотоксинов и глюкан. Шестая группа получала корм, содержащий смесь микотоксинов с добавлением куркумы в количестве 0,5 %. Седьмая группа получала корм, не содержащий микотоксины, но с добавлением ХКГ в количестве 0,2 %. Согласно исследованиям, микотоксины оказывали отрицательное воздействие на кишечник, что проявлялось в снижении численности полезной микрофлоры. Использование глюкана и куркумина на фоне микотоксикоза приводило к снижению количества лактобактерий, бифидобактерий, эшерихий с нормальной ферментативной активностью на 22,1 % (р<0,01), 19,89 % (р<0,05), 27,58 % (p<0,001) и 34,16 % (p<0,001), 39,12 % (p<0,001), 56,22 % (p<0,001). В то же время введение в рацион белых крыс комплекса ХГК способствовало улучшению состояния кишечной микрофлоры.

The studies were conducted in the mycotoxin laboratory of the toxicology department of the FSBSI «FCTRBS-ARRVI». The experiments were carried out on 63 white rats, which were divided into 7 groups. The first group served as a biological control and received a complete feed without mycotoxins. In the second group, the animals were exposed to mycotoxins: T‑2 toxin, zearalenone, deoxynivalenol, aflatoxin B1 and fumonisin B1. The third and fourth groups were fed feed contaminated with mycotoxins, against the background of using a mixture of chitin‑glucan complex (CGC) with turmeric at dosages of 0.05  % and 0.2  % of the diet. The fifth group received feed containing a mixture of mycotoxins and glucan. The sixth group received feed containing a mixture of mycotoxins with the addition of turmeric at a concentration of 0.5 %. The seventh group received feed that did not contain mycotoxins, but with the addition of CGC at a concentration of 0.2 %. According to the studies, mycotoxins had a negative effect on the intestines, which manifested itself in a decrease in the number of beneficial microflora. The use of glucan and curcumin against the background of mycotoxicosis led to a decrease in the number of lactobacilli, bifidobacteria, Escherichia coli with normal enzymatic activity by 22.1 % (p<0.01), 19.89 % (p<0.05), 27.58 % (p<0.001) and 34.16 % (p<0.001), 39.12% (p<0.001), 56.22 % (p<0.001). At the same time, the introduction of CGC complex into the diet of white rats contributed to the improvement of the intestinal microflora.

1. Вафин, Ф. Р. Влияние хитинглюканового комплекса Candida pseudotropicalis на биохимический статус цыплят-бройлеров / Ф. Вафин, А. Ф. Хасиятуллин // Молодежные разработки и инновации в решении приоритетных задач АПК : материалы Международной научной конференции студентов, аспирантов и учащейся молодежи, профессора И.Н. Никитина, Казань, 28–29 марта 2024 года. – Казань : Казанская государственная академия ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана, 2024. – С. 361-363.


2. Диагностика и ветеринарная помощь при отравлениях животных (Общие принципы) / А. М. Тремасова, И. И. Идиятов, Э. И. Семенов [и др.]. – Казань, 2022. – 236 с.


3. Хасиятуллин, А. Ф. Изучение острой токсичности и кумулятивных свойств бета-глюканов растительного и дрожжевого происхождения / А. Ф. Хасиятуллин // Ветеринарный врач. – 2021. – № 3. – С. 71-76.


4. An, K. T-2 toxin induces gut and liver injury through triggering gut microbiota dysbiosis. Poultry Science, 105577 / K. An, D. Yan, X. Lv [et al.]. -


5. Aoe, S. Low molecular weight barley β-glucan affects glucose and lipid metabolism by prebiotic effects / S. Aoe, K. Mio, C. Yamanaka [et al.]. // Nutrients. – 2020. - 13(1). - 130. https://doi.org/10.3390/nu13010130


6. Elmassry, M. Gut homeostasis and microbiota under attack: impact of the different types of food contaminants on gut health / M. Elmassry, A. Zayed, M. Farag // Crit Rev Food Sci Nutr. – 2022. - 62(3). - 738-763. doi: 10.1080/10408398.2020.1828263


7. Hewlings, S.J., Kalman, D.S. Curcumin: a review of its effects on human health / S. Hewlings, D. Kalman // Foods. – 2017. - 6 (10). https://doi.org/10.3390/foods6100092


8. Huang, T. The role of gut microbiota in anorexia induced by T-2 toxin / T. Huang, A. Li, S. Zhang [et al.]. // Ecotoxicology and environmental safety. - 2024. – 281. - 116612.


9. Liu, M.J. Effect of curcumin on laying performance, egg quality, endocrine hormones, and immune activity in heat-stressed hens / M. Liu, Y. Lu, P. Gao [et al.]. // Poult. Sci. - 2020. - 99 (4). - 2196–2202. https://doi.org/10.1016/j. psj.2019.12.001


10. Ye, N. Folic acid-modified lactoferrin nanoparticles coated with a laminarin layer loaded curcumin with dual-targeting for ulcerative colitis treatment / N. Ye, P. Zhao, S. Ayue [et al.]. // Int. J. Biol. Macromol. – 2023. – 232.